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核酸相关> DNA标记和检测> 疾病相关DNA检测
2B3D微卫星不稳定性检测试剂盒(荧光PCR-毛细管电泳法)
产品编号: D8503M
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价格: ¥ 2568.00
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D8503S 2B3D微卫星不稳定性检测试剂盒(荧光PCR-毛细管电泳法) 50次 798.00元
D8503M 2B3D微卫星不稳定性检测试剂盒(荧光PCR-毛细管电泳法) 200次 2568.00元

碧云天研发生产的2B3D微卫星不稳定性检测试剂盒(荧光PCR-毛细管电泳法),即2B3D Microsatellite Instability Assay Kit by Fluorescent PCR and Capillary Electrophoresis,简称MSI Assay kit,也被称为2B3D微卫星不稳定性分析试剂盒或MSI Analysis System,是一种通过荧光PCR和毛细管电泳,快速、高灵敏地检测人类细胞微卫星不稳定性的试剂盒。

微卫星(Microsatellite)是普遍存在于人类基因组中长度为1-6个碱基对的短串联重复(Short tandem repeat, STR) DNA序列,重复次数为10-50次,包括单核苷酸、双核苷酸或多核苷酸重复序列[1]。微卫星不稳定性(Microsatellite instability, MSI)是指由于基因组中短重复核苷酸序列的缺失或插入导致DNA序列长度改变,可以用于衡量DNA复制错误发生频率。根据出现的MSI的程度,可将MSI分为高频微卫星不稳定性(MSI-high, MSI-H)和低频微卫星不稳定性(MSI-low, MSI-L)。MSI主要由四种错配修复(Mismatch-repair, MMR)蛋白(MLH1、MSH2、MSH6、PMS2)修复。MMR基因的遗传和表观遗传学(如甲基化等)改变会导致MMR蛋白功能缺失,从而导致错配修复缺陷(MMR deficiency, dMMR)发生,引起MSI [2]。MSI与肿瘤的发生密切相关,但在不同肿瘤中的发生率存在较大差异,已知发生率较高的实体瘤包括子宫内膜癌、结直肠癌和胃癌等。MSI的检测具有重要的临床意义。林奇综合征(Lynch syndrome)是一种常染色体显性遗传病,与结直肠癌(Colorectal cancer, CRC)和子宫内膜癌(Endometrial cancer)的发生有高度相关性,可通过MSI检测进行排查;MSI检测可用于辅助肿瘤的诊断和分类;作为结直肠癌预后和治疗的重要参考指标;肿瘤免疫治疗的疗效预测[3]。此外,MSI还可用于dMMR导致的生殖系统缺陷患者的临床诊断[3]。

检测MSI的方法主要包括免疫组化法(IHC)、检测组织切片中MMR蛋白(MLH1、MSH2、MSH6、PMS2)的表达情况、PCR法比较正常样品和肿瘤样品中特定的微卫星序列扩增片段大小等。免疫组化法检测中,在某些情况下,MMR蛋白虽失去修复错配的能力但仍可以与抗体结合,可能导致假阳性结果。相比之下,PCR法得出的结果更为可靠,具有更高的准确度、灵敏度和特异性。

通常情况下,MSI分析需至少检测5个微卫星位点。目前国内外权威指南推荐的Panel有两个:一个是2B3D Panel,包含两个单核苷酸位点(BAT25和BAT26)以及三个双核苷酸位点(D2S123、D5S346和D17S250);另一个是5D Panel,包含五个单核苷酸位点(BAT25、BAT26、NR21、NR24和NR27) [4]。上述两个MSI检测Panel在检测特异性、灵敏度虽有细微差异,但均已经过大量研究数据验证,具有参考性。碧云天同时提供基于5D Panel (D8501)及2B3D Panel (D8503)的MSI检测试剂盒,用户可根据研究需要自行选择相应的试剂盒。

本试剂盒是基于2B3D Panel的MSI检测试剂盒,提供5对荧光标记引物的混合物,可用于上述5个单核苷酸位点的多重扩增,且其特异性经过实验验证,具体信息如下表所示。

Marker Name Gene GenBank ID Size Range Fluorescent Marker
BAT25 c-kit X06182 110-130bp TAM
BAT26 hMSH2 U04045 100-120bp FAM
D2S123 hMSH2 Z1655 197-227bp HEX
D5S346 APC NT_034772.5 96-122bp HEX
D17S250 BRCA1 X54562 151-169bp FAM

注:表中所列出的等位基因片段大小为使用本试剂盒提供的引物及试剂进行多重扩增,然后使用3730xl DNA Analyzer与50cm毛细管分析所得。当使用不同的扩增试剂或仪器时,等位基因片段的大小可能略有变化。

使用本试剂盒进行多重荧光PCR及毛细管电泳分析的结果请参考图1。

图1. 碧云天2B3D微卫星不稳定性检测试剂盒(荧光PCR-毛细管电泳法) (D8503)用于HEK293T细胞基因组DNA的检测效果图。以100ng HEK293T细胞基因组DNA为模板使用本试剂盒进行多重PCR扩增,产物使用ABI测序仪(3730xl DNA Analyzer)与50cm毛细管分析。x轴代表产物及内标GeneScan™ -500 LIZ的碱基数,y轴代表相对荧光强度。从左始依次为D5S346 (HEX标记,绿色峰)、BAT26 (FAM标记,蓝色峰)、BAT25 (TAM标记,黑色峰)、D17S250 (FAM标记,蓝色峰)、D2S123(HEX标记,绿色峰)两个单核苷酸位点(BAT25和BAT26)和三个双核苷酸位点(D5S346、D17S250和D2S123)对应的峰。实际检测结果会因样品、检测仪器等的不同而存在差异,图中检测结果仅供参考。

本试剂盒采用PCR法,提供了扩增上述微卫星位点序列所需试剂,用户可在扩增完成后通过毛细管电泳分析待测样品及对应正常样品的扩增产物生成的等位基因图谱,并进行对比。当测试样品相较于正常样品呈现波峰的移动或数目改变,即等位基因移动或出现新的等位基因,则称为微卫星不稳定。通常微卫星位点中40%及以上的位点出现不稳定时为高频微卫星不稳定(MSI-H),小于40%的微卫星位点出现不稳定时为低频微卫星不稳定(MSI-L)。对于本试剂盒,出现2个及2个以上的微卫星不稳定位点则可判定为MSI-H,具体可参考图2。

图2. 碧云天2B3D微卫星不稳定性检测试剂盒(荧光PCR-毛细管电泳法) (D8503)进行微卫星不稳定性分析示意图。使用本试剂盒分别对正常样品(图A和图C)和MSI阳性的测试样品(图B和图D)进行MSI检测及分析。测试样品中出现了正常样品中不存在的新等位基因(黑色箭头所示),表明测试样品在该位点存在MSI。从图中可以看出,测试样品中BAT26及BAT25这两个位点均出现MSI,因此该样品可判定为MSI-H。注:由于D5S346、BAT26及BAT25三个位点峰图临近,为清楚的呈现结果,本图未给出D5S346、D17S250和D2S123这三个没有差异位点的峰图。实际检测结果会因样品、检测仪器等的不同而存在差异,图中检测结果仅供参考。

本试剂盒同时提供包含上述5个微卫星位点标记基因的PCR对照模板(Control Template),可辅助判断试剂盒是否能正常工作,结果请参考图3。

图3. 碧云天2B3D微卫星不稳定性检测试剂盒(荧光PCR-毛细管电泳法) (D8503)用于对照模板(Control Template)的检测效果图。对照模板用量为5ng,其它条件和图1相同。实际检测结果会因样品、检测仪器等的不同而存在差异,图中检测结果仅供参考。

本试剂盒仅包含多重荧光PCR实验所需试剂,如需对产物进行毛细管电泳及分析,可联系碧云天的技术服务部(service@beyotime.com)。

总体积为10µl的扩增体系时,本试剂盒的小包装和中包装分别可以进行50次和200次反应。

包装清单:
产品编号 产品名称 包装
D8503S-1 MSI PCR Mix (2X) 250μl
D8503S-2 2B3D MSI Primer Pair Mix (10X) 50μl
D8503S-3 Control Template 25μl
D8503S-4 Ultrapure Water 200μl
说明书 1份

产品编号 产品名称 包装
D8503M-1 MSI PCR Mix (2X) 1ml
D8503M-2 2B3D MSI Primer Pair Mix (10X) 200μl
D8503M-3 Control Template 100μl
D8503M-4 Ultrapure Water 800μl
说明书 1份
保存条件:

-20ºC保存,一年有效。其中2B3D MSI Primer Pair Mix (10X)须避光保存。

注意事项:

建议使用带滤芯的吸头配制PCR体系,这样可以最大限度的避免污染导致的假阳性。推荐BeyoGold™无菌滤芯盒装吸头(FTIP631/FTIP635/FTIP638)。

2B3D MSI Primer Pair Mix (10X)中含有荧光染料,保存本产品或设置荧光PCR反应时应避免强光照射,以尽量避免荧光淬灭问题。

经测试,本试剂盒反复冻融10次对使用效果无显著影响,但仍需尽量避免反复冻融。反复冻融可能使产品性能下降。

本试剂盒提供的5个微卫星位点标记基因的PCR对照模板(Control Template),仅用于辅助判断试剂盒是否能正常工作,不能作为正常样品的标准品。

样品进行多重荧光PCR后,需要使用毛细管电泳仪进行分离基因分析。当使用不同的聚合酶或仪器组合时,等位基因的大小可能会有所不同。

如需对产物进行毛细管电泳及分析,可联系碧云天技术服务部(service@beyotime.com)。

本产品仅限于专业人员的科学研究用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品,不得存放于普通住宅内。

为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。

使用说明:
1. 正常样品(Normal Sample)及测试样品(Test Sample)准备。
选择合适的基因组DNA提取试剂盒,对正常或待测的细胞或组织样品进行基因组DNA抽提。推荐使用碧云天生产的动物基因组DNA快速抽提试剂盒(PCR分析用) (D0065)、基因组DNA小量抽提试剂盒(通用型, 离心柱式) (D0063)或BeyoMag™基因组DNA小量抽提试剂盒(通用型, 磁珠法) (D0088)。具体的细胞或组织基因组DNA样品的制备步骤请参考相关试剂盒的使用说明。
注:制备好的基因组DNA应立即使用或适当分装后-20ºC保存,尽量避免反复冻融。
2. PCR反应体系的设置。
a. 融解并混匀反应所需的各种溶液,置于冰浴上或冰盒内。
b. 首次扩增建议参考下表设置不同的实验组以确保实验的顺利进行。
Group Template
Test Sample Genomic DNA from Tumor Cells or Tissues
Normal Sample Genomic DNA from Normal Cells or Tissues
Positive Control Control Template (D8503-3)
Blank Control Ultrapure Water (D8503-4)
c. 参考下表在冰浴上设置PCR反应体系:
Reagent Test/Normal Sample Positive Control Blank Control
MSI PCR Mix (2X) 5µl 5µl 5µl
MSI Primer Pair Mix (10X) 1µl 1µl 1µl
Genomic DNA from Tumor/Normal Cells or Tissues (10-100ng) x µl - -
Control Template - 0.5µl -
Ultrapure Water (4-x)µl 3.5µl 4µl
Total Volume 10µl 10µl 10µl
d. 用移液器轻轻吹打混匀或轻微Vortex混匀,室温离心数秒,使液体积聚于管底。
e. 把配制好的PCR反应管置于PCR仪上,按照下表设置PCR程序,进行PCR反应。
Step Temperature Time Cycles
Initial Denaturation 95ºC 3min 1
Denaturation 95ºC 15s 30
Annealing 60ºC 15s
Extension 72ºC 15s
Final Extension 72ºC 10min 1
Hold 4ºC - -
注:完成PCR扩增后,将样品保存在-20ºC,避光保存。模板DNA的数量和质量会影响PCR的产量,因此对于具有不同DNA丰度的样品,需对模板DNA的用量及循环数进行一定的优化,推荐使用10-100ng模板DNA,循环数可根据DNA量的多少进行适当调整,但不宜超过32个循环,必要时扩增产物可适当稀释后再进行毛细管电泳分析。
3. 毛细管电泳分析。
使用遗传分析仪毛细管电泳检测待测样品及对照样品的多重PCR扩增产物。对于毛细管电泳分析,可联系碧云天技术服务部(service@beyotime.com)。
4. 结果分析。
参考图2分别对5个单核苷酸位点进行微卫星不稳定性分析,并参考下表对测试样品进行MSI的结果判定:
MSI Number MSI frequency Result
≥2 ≥40% MSI-H
1 <40% MSI-L
0 0 MSS
注:MMS (Microsatellite stable)即微卫星稳定;MSI-L即低频微卫星不稳定;MSI-H即高频微卫星不稳定。
参考文献:
1. Nardon E, Glavač D, Benhattar J, Groenen PJ, Höfler G, et al. Diagn Mol Pathol. 2010. 19(4):236-242.
2. Huang YQ, Yuan Y, Ge WT, Hu HG, Zhang SZ, et al. J Zhejiang Univ Sci B. 2010. 11(9):647-653.
3. Nouri Nojadeh J, Hashemzadeh S, Samadi Kafil H, Behrouz Sharif S, et al. EXCLI J. 2018.17:945-951.
4. Bai W, Ma J, Liu Y, et al. Cancer Med. 2019;8(5):2157-2166.
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