使用说明：
1. 对于培养的细胞样品：
   a. 融解细胞与组织裂解液(一氧化氮检测用)，混匀备用。
   b. 对于贴壁细胞：去除培养液，用PBS、生理盐水或无血清培养液洗一遍。按照6孔板每孔加入100-
      200微升裂解液的比例加入裂解液。用枪吹打数下，使裂解液和细胞充分接触。通常裂解液接触细胞
      1-2秒后，细胞就会被裂解。
   c. 对于悬浮细胞：离心收集细胞，用手指把细胞用力弹散。按照6孔板每孔细胞加入100-200微升裂解
      液的比例加入裂解液。再用手指轻弹以充分裂解细胞。充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。如果细胞
      量较多，必需分装成50-100万细胞/管，然后再裂解。大团的细胞较难裂解充分，而少量的细胞由于
      裂解液容易和细胞充分接触，相对比较容易裂解充分。
   d. 充分裂解后，10000-14000g离心3-5分钟，取上清，即可进行后续的一氧化氮检或蛋白浓度测定等操
      作。样品制备后如果当日不能完成一氧化氮检测，可以-20℃保存，但仍宜尽快完成检测。
   裂解液用量说明：通常6孔板每孔细胞加入100微升裂解液已经足够，但如果细胞密度非常高可以适当
   加大裂解液的用量到150微升或200微升。
2. 对于组织样品：
   a. 融解细胞与组织裂解液(一氧化氮检测用)，混匀备用。
   b. 把组织剪切成细小的碎片。
   c. 按照每20毫克组织加入100-200微升裂解液的比例加入裂解液。(如果裂解不充分可以适当添加更多的
      裂解液，如果需要高浓度的样品，可以适当减少裂解液的用量。)
   d. 用玻璃匀浆器或其它适当的匀浆设备匀浆，直至充分裂解。(如果组织样品本身非常细小，加入裂解
      液后可以直接通过强烈vortex使样品裂解充分。直接裂解的优点是比较方便，不必使用匀浆设备，缺
      点是不如使用匀浆设备那样裂解得比较充分。)
   e. 充分裂解后，10000-14000g离心3-5分钟，取上清，即可进行后续的一氧化氮检或蛋白浓度测定等操
      作。样品制备后如果当日不能完成一氧化氮检测，可以-20℃保存，但仍宜尽快完成检测。